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T淋巴細胞轉化實驗
發(fā)布時間： 2023-01-10 點擊次數(shù)： 1148次原理
T 細胞在體外培養(yǎng)時，受到非特異性有絲分裂原（如PHA、ConA）刺激后，可出現(xiàn)細胞體積增大，代謝旺盛，蛋白和核酸合成增加,即向淋巴母細胞轉化。淋巴細胞轉化率的高低可以反映機體的細胞免疫水平，因此可作為測定機體免疫功能的指標之一。
淋巴細胞轉化試驗有形態(tài)計數(shù)法、MTT 法和同位素法三種。
MTT 法即四甲基偶氮唑鹽微量酶反應比色法。MTT 是一種噻唑鹽，化學名3-（4，5-二甲基-2-噻唑）-2，5-二苯基溴化四唑，水溶液為黃橙色。小鼠脾細胞受到ConA 作用后發(fā)生增殖活化，其胞內線粒體琥珀酸脫氫酶活性相應升高，MTT 作為其底物參與反應，形成藍色的甲臜（Formazan）顆粒沉積于細胞內或細胞周圍，經鹽酸─異丙醇溶解后為藍色溶液，可用酶標測定儀測定細胞培養(yǎng)物的OD 值，測定波長570 nm。根據(jù)OD 值的大小計算反應體系中細胞增殖程度。
3H-TdR 摻入法：細胞增殖的基本條件或前提為細胞質和細胞核的復制，這是正常細胞增殖過程缺一不可的前提。一般來說，一個細胞周期可大致分為四期，即G1 期、S期、G2 期和M期。其中S期為DNA合成期，主要功能活動為DNA合成。3H-TdR即（甲基-3H）胸腺嘧啶核苷（[3H-methyl]thymidine），是DNA合成的前體。加入細胞培養(yǎng)液中后被細胞攝取作為DNA合成的原料。細胞合成的DNA越多，則所摻入的3H-TdR就越多，因此，檢測所摻入的3H-TdR就可反映細胞增殖的程度。因該方法有同位素污染問題，故我們實習中仍用MTT法。材料與儀器
ICR小鼠
RPMI1640培養(yǎng)液 Hank's液 刀豆蛋白A MTT 碘酒 酒精
無菌尖吸管 刻度吸量管 無菌解剖器械 平底培養(yǎng)板 CO2培養(yǎng)箱 酶標測定儀步驟
1. 小鼠脾細胞懸液的制備
取一個滅菌的平皿，加入5 ml Hank's液。頸椎脫臼法處死小鼠，取脾臟，放入平皿中，在鋼網(wǎng)上研磨并過篩，制成細胞懸液。取出100 μl用于計數(shù)。將其余細胞懸液移入一離心管中，離心1500 rpm，7 min，（或1000 rpm，10 min）棄去上清，用RPMI1640 培養(yǎng)液稀釋，制成2.5×106 /ml的脾細胞懸液，然后加入ConA使每孔最終濃度為2 μg/ml，同時做不加ConA的陰性對照孔。2. 將上述細胞懸液加入96孔平底培養(yǎng)板中，每孔0.1 ml。
3. 將培養(yǎng)板放入含有5 %CO2的37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48-72 小時，在培養(yǎng)結束前4-6 小時，于培養(yǎng)板各孔內加入1 mg/mlMTT液，10 μl/孔。37 ℃培養(yǎng)6 小時。4. 各孔內加入0.01 M 鹽酸—異丙醇110 μl，30 分鐘內（或加2 %SDS100 ul/孔，過夜）用酶標測定儀測OD 值，測定波長570 nm。注意事項
1. 由于本實驗需要培養(yǎng)3 天，才能觀察結果。因此，在操作時應注意無菌操作，避免細菌污染，導致實驗的失敗。
2. 細胞操作要輕柔、迅速，以免細胞損傷影響實驗結果。
常見問題
一、實驗結果
將實驗組和對照組三個復孔的 OD 值平均。
轉化值=實驗組的平均OD 值-對照組的平均OD 值。
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